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技術(shù)文章

反轉(zhuǎn)錄病毒產(chǎn)毒細(xì)胞系建立實(shí)驗

閱讀:265發(fā)布時間:2015-6-23

實(shí)驗材料    包裝細(xì)胞系
試劑、試劑盒    HEPESCaCl2甘油DMSO
儀器、耗材    培養(yǎng)皿培養(yǎng)板離心機(jī)
實(shí)驗步驟    
1.  在轉(zhuǎn)染前1天,在10 cm 培養(yǎng)皿中接種包裝細(xì)胞,接種密度大約相當(dāng)于10%~20%片的細(xì)胞數(shù)。

2.  將10 μg 含有藥物抗性基因的反轉(zhuǎn)錄病毒質(zhì)粒DNA加入0.5 ml HeBS。再加入32 μl 2 mol/l CaCl2并同時輕輕搖晃。用手指輕彈試管外壁約 30 s,然后在室溫下溫育45 min,直到形成細(xì)小的淡藍(lán)色沉淀。

3.  移去包裝細(xì)胞的培養(yǎng)液,吸取HeBS-DNA沉淀輕輕加在培養(yǎng)皿的*。在組織培養(yǎng)操作櫥內(nèi)讓細(xì)胞接觸DNA 20 min,大約10 min 后,輕輕轉(zhuǎn)動培養(yǎng)皿以均勻分散DNA溶液,加10 ml 培養(yǎng)液,將細(xì)胞置于37℃溫育4 h。

4.  吸盡培養(yǎng)液,輕輕加入2.5 ml 室溫的HeBS/甘油溶液。將培養(yǎng)血放回培養(yǎng)箱中溫育3.5 min 或90 s,或?qū)τ谔囟?xì)胞經(jīng)測定的合適的溫育時間。快速棄除HeBs/甘油溶液,細(xì)胞用10 ml 培養(yǎng)液輕輕清冼, 重復(fù)用培養(yǎng)液清洗1次,加5 ml 含有血清的培養(yǎng)液,培養(yǎng)18~24 h。

5.  移出培養(yǎng)液,用0.45 μm的濾器過濾,獲得的上清含有短暫產(chǎn)生的病毒;將其貯存于 -70℃或-80℃,或者立即用于感染另一個帶有不同類別的包膜基因的包裝細(xì)胞系, 以產(chǎn)生一個被感染的產(chǎn)生病毒的細(xì)胞系。
 
6.  在轉(zhuǎn)染的細(xì)胞中加10 ml 培養(yǎng)液,培養(yǎng)2~3天,然后繼續(xù)步驟10。
 
7.  在感染前1天,將包裝細(xì)胞系按1:10至1:20傳代。
 
8.  移去將要感染的包裝細(xì)胞系的培養(yǎng)液。加病毒如下:用于感染一個10 cm 的培養(yǎng)皿上的細(xì)胞,稀釋0.1~1.0 ml 毒原液至終體積3~5 ml 并加800 μg/ml 的polybrene至8 μg/ml;如感染一個6 cm 的培養(yǎng)皿,稀釋0.1~1 ml 病毒原液至終體積2 ml,并加800μg/ml  的polybrene至終濃度8 μg/ml 溫育1 h。
 
9.  對于10 cm 培養(yǎng)皿則,加培養(yǎng)至終體積10 ml,對于6 cm 培養(yǎng)皿則加4 ml。培養(yǎng)2~3天。
 
10.  在轉(zhuǎn)染或感染后2~3夭,將轉(zhuǎn)染的或惑染的細(xì)胞按1:10或1:20傳代, 加選擇培養(yǎng)液,培養(yǎng)3天。換新的選擇培養(yǎng)液,再培養(yǎng)4~7天直至可見到細(xì)胞克隆。

11.  用克隆圓柱體挑取分隔良好的細(xì)胞克隆,每個克隆轉(zhuǎn)移至2個24孔培養(yǎng)板或6孔培養(yǎng)板的培養(yǎng)孔中。生長至50%~90%匯片。

12.  移去培養(yǎng)液,換成1/2體積的培養(yǎng)液。視包裝細(xì)胞系不同而培養(yǎng)1~3天,移出培養(yǎng)液,立即對其進(jìn)行直接滴定,或貯存于-70℃或-80℃。

13.  繼續(xù)傳代各產(chǎn)病毒細(xì)胞克隆,直至其可凍存,和(或)直至鑒別出的產(chǎn)病毒細(xì)胞。當(dāng)鑒定出一個好的產(chǎn)病毒細(xì)胞克隆時,細(xì)胞分裝在20~25支凍存管(1~2 ml 每支) 中,培養(yǎng)液含10%~50%DMSO,在液氮中凍存。
收起 
注意事項    
1.  如果轉(zhuǎn)染的目的是為了生成穩(wěn)定的產(chǎn)病毒細(xì)胞系,有兩種選擇。*種選擇是從那些已經(jīng)穩(wěn)定整合了載體質(zhì)粒的轉(zhuǎn)染細(xì)胞中進(jìn)行選擇。這些細(xì)胞可置于藥物選擇之下,對產(chǎn)生的藥物抗性細(xì)胞進(jìn)行產(chǎn)毒篩選。第二種選擇是用“交叉感染"的包裝細(xì)胞系。上述第5步中收集到的短暫產(chǎn)生的病毒可用來感染另一個包裝細(xì)胞系,如步驟7~9。其后被感染的包裝細(xì)胞可置于藥物選擇之下。無論用哪種方法,目的都是為了分離穩(wěn)定整合了病毒基因組并產(chǎn)生可能的zui高滴度的包裝細(xì)胞。

2.  這個方法較用轉(zhuǎn)染的細(xì)胞方法可能更受次迎,因為由感染而產(chǎn)生的前病毒常常是與宿主基因組穩(wěn)定地并在整合后不發(fā)生重排或丟失。用這種方法時必須用表達(dá)不同類別的病毒糖蛋白的兩種包裝細(xì)胞系,當(dāng)一個包裝細(xì)胞系產(chǎn)生一種持定的env搪蛋白時,該包裝細(xì)胞的表面的受體就被那種病毒糖蛋白結(jié)合而被阻斷。當(dāng)用交叉感染時,兩種包裝細(xì)胞系必須是同源的。


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