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初級(jí)會(huì)員 | 第2年

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IBL試劑盒
*原時(shí)間試劑
血清
肉類(lèi)及相關(guān)產(chǎn)品 實(shí)驗(yàn)室耗材系列 細(xì)胞系列 抗體純化試劑 單抗、多抗研制用材料 細(xì)胞培養(yǎng)用材料和試劑 免疫分析相關(guān)試劑 免疫分析科研試劑盒 抗體純化試劑盒 抗血清系列 動(dòng)物血漿系列 熱滅活血清系列 碳吸附過(guò)濾血清系列 培養(yǎng)細(xì)菌專用血清系列 動(dòng)物血清系列(pet瓶) HRP標(biāo)記抗原 天然純化抗原 動(dòng)物Ig類(lèi)抗原 基因重組抗原 膠體金標(biāo)記一抗(多抗為抗原親和純化,單抗為G或A蛋白親和純化 ) HRP標(biāo)記二抗(抗原親和純化) HRP標(biāo)記一抗(多抗為抗原親和純化,單抗為G或A蛋白親和純化) 多克隆抗體二抗/PcAb(未標(biāo)注的為G或A蛋白親和純化) 多克隆抗體一抗/PcAb(未標(biāo)注的為G或A蛋白親和純化) 單克隆抗體二抗/McAb(G或A蛋白親和純化) 單克隆抗體一抗/McAb(G或A蛋白親和純化) 裂解血 抗凝動(dòng)物血系列 脫纖維動(dòng)物血系列 無(wú)菌過(guò)濾動(dòng)物血清系列 輻照滅菌動(dòng)物血清系列 無(wú)菌采制動(dòng)物血清系列
科研抗體
PCR試劑盒
科研細(xì)胞
細(xì)胞生物學(xué)試劑

包拉米蟲(chóng)感染熒光 PCR 檢測(cè)試劑盒說(shuō)明書(shū)

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1、 包拉米蟲(chóng)感染熒光PCR檢測(cè)試劑盒簡(jiǎn)介 
貨號(hào):HB-910 
本試劑盒采用熒光PCR技術(shù),檢測(cè)組織樣品總DNA中包拉米蟲(chóng)DNA。本試劑盒采用特異性的引物和
探針擴(kuò)增目的基因,并制備了陽(yáng)性對(duì)照用于結(jié)果判定,通過(guò)優(yōu)化的反應(yīng)體系,能夠zui大限度地檢測(cè)
包拉米蟲(chóng)核酸。
2、試劑盒組成 
試劑盒組成包括*和核酸擴(kuò)增試劑,具體組成參見(jiàn)表 1:
表 1:試劑盒組成(50test/盒)
組成成分 體積
樣品 DNA 提取液 1
樣品 DNA 提取液 2
5ml×1 管
500µl×1 管
核酸擴(kuò)增試劑: DEPC 水
包拉米蟲(chóng)熒光 PCR 反應(yīng)液
Taq 酶(5U/ul)
陰性對(duì)照
包拉米蟲(chóng)熒光 陽(yáng)性對(duì)照
5ml×1 管
750µl×1 管
40µl×1 管
1ml×1 管
1ml×1 管
*保存條件:樣品 DNA 提取液 1、2 和試劑盒須在-20℃保存。 
3、樣本采集,存放及運(yùn)輸 
3.1 樣本采集:所用取樣器材必須經(jīng)高壓滅菌并烘干。按相關(guān)檢測(cè)標(biāo)準(zhǔn)*的方法,取貝類(lèi)組
織30mg標(biāo)記后置于離心管中,按照試劑盒配套的DNA提試劑操作說(shuō)明提取DNA模板。
3.2存放:研磨后的樣本在2 ℃-8 ℃條件下保存應(yīng)不超過(guò)24 h;-70 ℃以下可*保存,但應(yīng)避免
反復(fù)凍融(zui多凍融3次)。
3.3 運(yùn)輸:采用泡沫箱加冰密封進(jìn)行運(yùn)輸。 
4、檢測(cè)步驟 
4.1 DNA 核酸提取操作方法(在樣本處理區(qū)進(jìn)行): 
4.1.1 取 n 個(gè) 1.5ml 滅菌 Eppendorf 管,其中 n 為待檢樣品數(shù)和一管陰性對(duì)照之和,對(duì)每個(gè)管進(jìn)行
編號(hào)標(biāo)記。(注:試劑盒中的陽(yáng)性對(duì)照直接作為 PCR 檢測(cè)的模板,無(wú)需提取核酸)
4.1.2 每管加入 100 µl DNA 提取液 1,然后分別加入待測(cè)樣本和陰性對(duì)照各 100µl,一份樣本換用一個(gè)吸頭;混勻器上震蕩混勻 5 s,于 4℃~25℃條件下,12 000 r/min 離心 10 min。
4.1.3 盡可能吸棄上清且不碰沉淀,再加入 10µl DNA 提取液 2,混勻器上震蕩混勻 5s,于 4℃~25℃條件下,2 000 r/min 離心 10 s。
4.1.4 100℃ 干浴或沸水浴 10 min;加入 90µl DEPC 水,12 000 r/min 離心 10 min,吸取上清,即為提取的 DNA,冰上保存待用(提取的 DNA 需在 2 h 內(nèi)進(jìn)行 PCR 擴(kuò)增或放置于-70℃冰箱內(nèi)保存)。
4.2包拉米蟲(chóng)感染熒光PCR檢測(cè)試劑盒 熒光 PCR 檢測(cè) 
4.2.1 擴(kuò)增試劑準(zhǔn)備(在反應(yīng)混合物配制區(qū)進(jìn)行):
從試劑盒中取出相應(yīng)的 KHV 熒光 PCR 反應(yīng)液、Taq 酶,2000×g 離心 5 秒鐘。每個(gè)樣品測(cè)試反應(yīng)
體系配制見(jiàn)下表 2。
表 2 每個(gè)樣品測(cè)試反應(yīng)體系配制表
試劑 熒光 PCR 反應(yīng)液 Taq 酶 合計(jì)
用量 14.5 μL 0.5μL 15μL
4.2.2 加樣(樣本處理區(qū)進(jìn)行):
向每個(gè)熒光 PCR 管孔中各分裝 15μL 的混合液,再分別加入樣本 DNA 模板 10μL,蓋緊管蓋,
500 r/min 離心 30 s。
4.2.3 PCR 檢測(cè)(在檢測(cè)區(qū)進(jìn)行):
循環(huán)條件設(shè)置:
*階段,94℃/3 min;
第二階段,92℃/15 sec,53℃/15 sec,60 o
C/30s ,40個(gè)循環(huán),在每次循環(huán)的60o
C延伸時(shí)收集
熒光。試驗(yàn)檢測(cè)結(jié)束后,根據(jù)收集的熒光曲線和Ct值判定結(jié)果。
5、結(jié)果判定 
5.1 結(jié)果分析條件設(shè)定
直接讀取檢測(cè)結(jié)果。閾值設(shè)定原則根據(jù)儀器噪聲情況進(jìn)行調(diào)整,以閾值線剛好超過(guò)正常陰性樣
品擴(kuò)增曲線的zui高點(diǎn)為準(zhǔn)。
5.2 質(zhì)控標(biāo)準(zhǔn)
5.2.1 陰性對(duì)照無(wú) Ct 值或無(wú)擴(kuò)增曲線。
5.2.2 陽(yáng)性對(duì)照的 Ct 值應(yīng)<28.0,并出現(xiàn)典型的擴(kuò)增曲線。否則,此次實(shí)驗(yàn)視為無(wú)效。
5.3 結(jié)果描述及判定
5.3.1 陰性:無(wú)Ct值或無(wú)擴(kuò)增曲線,示樣品中無(wú)包拉米蟲(chóng)核酸。
5.3.2 陽(yáng)性:Ct值≤30,且出現(xiàn)典型的擴(kuò)增曲線,示樣品中存在包拉米蟲(chóng)核酸。
5.3.3 有效原則:Ct>30的樣本建議重做。重做結(jié)果無(wú)數(shù)值者為陰性,否則為陽(yáng)性。
6、包拉米蟲(chóng)感染熒光PCR檢測(cè)試劑盒相關(guān)技術(shù)信息 
Taqman 探針:5'-FAM-TTAGGTGGATAAGAGCCGC-MGBNFQ-3'
上游引物 F:5'-CCCTGCCCTTTGTACACACC-3'
下游引物 R:5'-TCACAAAGCTTCTAAGAACGCG-3'

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